前瞻经济学人紧跟行业趋势，免遭市场淘汰
作为一个功能强大且使用简便的基因编辑工具，CRISPR-Cas9在医疗、农业等科研领域方面都有着巨大潜力，然而，这种基因编辑技术也并非完美，其面临着脱靶率、安全性，以及长序列修复等难题需要克服。
尤其是脱靶效应——CRISPR-Cas9可能会在错误的位点切割DNA双链造成未知的潜在风险，而这也是限制其进入临床应用的关键因素。因此，如何降低CRISPR-Cas9脱靶效应是当下迫切需要解决的难题。
近日，针对这一难题科学界有了新的发现。得克萨斯大学奥斯汀分校的研究人员揭示了导致CRISPR-Cas9基因编辑系统脱靶的分子结构机制，他们重新设计了Cas9蛋白的关键组件，与原始Cas9蛋白相比，在编辑效率不变的前提下将脱靶概率降低了数千倍。
目前，他们的这项研究成果以“StructuralbasisformismatchsurveillancebyCRISPR-Cas9”(CRISPR-Cas9错配监测的结构基础)为题在线发表于Nature。
一
发现：“手指状结构”是导致脱靶的根源
CRISPR-Cas9通过gRNA(向导RNA)将Cas9蛋白靶向目标DNA序列，以对目标DNA双链进行切割，从而实现基因编辑。在这个过程里，含有20个碱基对的gRNA通过与目标DNA碱基互补配对来识别需要编辑的位点。
然而，20个碱基对中，在其他碱基配对正确但最后3个(第18-20个)碱基不匹配时，Cas9蛋白能进行“纠正”并继续编辑，这就会导致CRISPR-Cas9系统出现脱靶效应。至于Cas9蛋白到底是如何进行“纠正”的，其分子层面的运行机制是怎么样的，这些还有待进一步探索。
在这项新研究中，论文的共同通讯作者、得克萨斯大学奥斯汀分校分子生物系助力教授DavidTaylor和KennethJohnson联合开发了一种名为“动力学引导结构测定”的技术，该技术使用得克萨斯大学奥斯汀分校Sauer结构生物学实验室的低温电子显微镜(Cryo-EM)来观察与分析Cas9蛋白在与错配的DNA相互作用时分子层面的结构变化。
DavidTaylor于2013年在耶鲁大学获得分子生物物理学和生物化学博士学位;2014年进入加州大学伯克利分校JenniferDoudna实验室从事博士后工作，期间他利用低温电子显微镜研究了CRISPR复合物的结构;2016年，他开始在得克萨斯大学奥斯汀分校分子生物系担任助理教授职务，同时他也是Sauer结构生物学实验室主任。
据了解，Sauer结构生物学实验室拥有全球领先的低温电子显微镜设施，能够以原子或接近原子的分辨率对蛋白质等一些大分子进行成像。早在2020年2月，该实验室利用低温电子显微镜全球首次创建并报道了新冠病毒刺突糖蛋白的原子级3D结构模型。
在此次的研究中，DavidTaylor团队发现，当gRNA在第18-20个碱基出现错配时，配对结构会变得比较松散，但Cas9蛋白并没有停下来，而是通过一个“手指状结构”牢牢结合这个错配区域，从而在分子层面稳定了RNA-DNA双链结构，使其看起来像是正确的配对，进而继续对DNA进行切割，最终导致了脱靶效应的出现。
具体而言如下图所示，左侧为Cas9蛋白寻找与基因模板(粉红色部分)匹配的特定DNA序列(红色和绿色部分)。当Cas9蛋白找到正确配对时(右上角)，它会继续切割和修改DNA序列;当Cas9蛋白在DNA的某个部分中遇到错配时(右下角)，它并没有停止，而是通过一种“手指状结构”(青色部分)来牢牢抓住DNA并保持稳定，使其表现得如同正确序列一样。
“这就好比，椅子的某条腿断了，若只是用胶带把断掉的腿粘在一起，虽然椅子又可以使用，但会摇摆不定，最终还会再次断开，所以这并不能算是完美的修复。”论文第一作者、得克萨斯大学奥斯汀分校分子生物系博士JackBravo说道。
对于这一发现，DavidTaylor也表示非常震惊，他表示：“如果不是通过低温电子显微镜亲眼看到Cas9蛋白在gRNA错配时出现这种手指状结构，我可能永远也想象不到它到底是怎么来稳定错配结构的，这些是先前从未有过的发现。”
二
研究：重新设计Cas9蛋白提高靶向性
通常来说，配对错误会使DNA变得松散、不稳定，而Cas9蛋白的这种手指状结构使DNA保持稳定。这也就意味着，如果能够通过某种方式破坏掉该部分DNA的稳定性，那Cas9蛋白就不会切割和编辑DNA，也就不会导致脱靶现象了。
基于这个发现，研究团队对Cas9蛋白进行了重新设计，将其手指状结构部分被改造成远离DNA。如此一来，在出现错配情况时，Cas9蛋白无法对错配的结构进行“加固”，进而就不会在在错配的位点对DNA序列进行切割和编辑，从分子层面解决了脱靶的出现。
“我们把全新设计的这种Cas9蛋白称为‘SuperFi-Cas9’，这是一种高保真蛋白变体，它脱靶的概率比天然Cas9蛋白要低约4000倍，而且编辑速率与天然Cas9蛋白一样快，大幅提升了基因编辑的安全性。”JackBravo说道。
据了解，目前，很多实验室重新设计了Cas9蛋白以减少脱靶效应的产生，但这些方法大多都是通过牺牲速率来提高准确率。
对此，JackBravo做了个比喻，“如果将不同实验室设计的各种版本的Cas9蛋白看作是不同型号的汽车，这些Cas9虽然比天然Cas9更为安全，但也付出了很大的代价，即它们就像是被限速了一样，行驶非常缓慢。而我们的SuperFi-Cas9就像一辆全新设计的汽车，它不但安全，而且还可以高速行驶。”
目前，研究团队已经验证了SuperFi-Cas9在试管中对DNA的编辑快速且精准;现阶段，他们正在活细胞中进行SuperFi-Cas9基因编辑试验;接下来，他们还将基于这项发现继续开发更安全、更高效的新型Cas9蛋白。
三
展望：减少脱靶效应将加速CRISPR进入临床应用
1987年，日本微生物学家石野良纯首次发现CRISPR;2012年，JenniferDoudna首次利用CRISPR进行基因编辑并获得了2020年诺贝尔化学奖;CRISPR基因编辑技术曾于2012年、2013年、2015年3次入选Science评选的“世界十大科学突破”。
被誉为基因“魔剪”的CRISPR-Cas9基因编辑系统是生命科学领域迄今为止最为重要的发现之一，它的出现加速了现代生物科学的发展进程，通过Cas9蛋白来寻找、切除并取代DNA的特定片段，可以实现从改变老鼠皮毛的颜色，到设计不传播疟疾的蚊子和抗虫害作物，再到治疗镰状细胞性贫血等各类遗传疾病，这项技术的影响非常深远。
CRISPR-Cas9系统主要是由Cas9蛋白和gRNA组成，其中Cas9蛋白具有切割DNA双链功能，gRNA起到导向的作用。在原型间隔区相邻的基序(PAM)存在的情况下，Cas9蛋白能在gRNA的导向作用下通过碱基互补配对到达不同的靶部位，切割靶标基因实现DNA双链断裂。
CRISPR-Cas9是继锌指核酸内切酶(ZincFingerNuclease，ZFN)、类转录激活因子效应物核酸酶(TranscriptionActivator-LikeeffectorNuclease，TALEN)之后出现的第3代基因编辑技术，其介导的基因编辑可用于生成转基因模型、调节转录、调控表观遗传等。
运作机制层面，ZFN、TALEN和CRISPR-Cas9三者的共同点，均是在基因组靶标位点引起DNA双链断裂，进而激活细胞自我修复机制，完成基因编辑。
不同点在于：ZFN和TALEN需要靶向DNA序列中的特异性蛋白来诱发DNA双链断裂，而CRISPR-Cas9则是通过利用一段特定序列的向导RNA(gRNA)将Cas9核酸酶靶向目标DNA序列，Cas9核酸酶切割目标DNA双链并造成双链断裂，从而实现更为高效地基因编辑，而这也是CRISPR-Cas9技术得以广泛应用的原因所在。
现阶段，CRISPR-Cas9的应用领域主要为以下几个方面：
其一，改良各种农作物。CRISPR-Cas9可以通过增加营养成分、抗病性，以及在恶劣天气和土壤条件下的生存能力来改良各种农作物。目前，这项基因编辑技术已经广泛应用于模式植物(拟南芥、烟草)和一些粮食作物，比如水稻、小麦、玉米等。
例如，由张锋、DavidLiu和KeithJoung共同创立的新型农业公司Pairwise，专注于利用基因编辑技术改良作物、水果和蔬菜等农作物生产，来应对全球粮食挑战。
其二，开发工业品和生物燃料。迄今为止，藻类生物还无法产生足够高水平的脂肪以支撑生物柴油的大规模量产，借助CRISPR-Cas9研究人员能够找到并移除限制脂肪产生的基因，藻类将二氧化碳转化为生物燃料的效率有望大幅提高。
例如，通过基因组学以解决全球能源与环境问题的美国生物技术公司SyntheticGenomics已经创造出了能产生2倍脂肪的藻类，用于生产生物柴油。目前该公司与石油公司埃克森美孚(ExxonMobil)合作，将实现到2025年每天生产1万桶藻类生物燃料的目标。
其三，也是最为重要的一个应用方向——开发新药物和新疗法。CRISPR-Cas9能够从基因层面为当下多种遗传和难治性疾病带来治愈的希望。据了解，目前国内外已开始进行多项基于CRISPR-Cas9基因编辑的临床试验，例如，“全球基因编辑三巨头”CRISPRTherapeutics、EditasMedicine和IntelliaTherapeutics的基于CRISPR-Cas9的基因疗法均已进入到临床试验阶段。
脱靶效应导致其进入临床的进程缓慢，而此次新发表的研究论文中，研究人员发现了导致CRISPR-Cas9脱靶的分子结构机制，并设计出新型Cas9蛋白使其脱靶概率降低4000倍，大幅提升安全性，相信这将进一步加速CRISPR-Cas9基因编辑技术进入临床应用。
参考资料：Bravo,J.P.K.,Liu,MS.,Hibshman,G.N.etal.StructuralbasisformismatchsurveillancebyCRISPR–Cas9.Nature(2022).
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