完整CRISPRCas9实验教程：从gRNA设计到单克隆挑选的详细指导

在当前生物技术领域中，CRISPR-Cas9技术已经成为基因编辑的重要工具。本文旨在提供一份详细的CRISPR-Cas9实验教程，从gRNA设计到单克隆挑选的全过程指导。通过本文，您将了解到如何设计高效的gRNA序列，掌握CRISPR-Cas9系统的原理与操作步骤，并学会如何进行单克隆筛选，确保实验结果的准确性和可靠性。无论您是初学者还是有一定经验的研究人员，本文都将为您提供全面的指导，帮助您成功应用CRISPR-Cas9技术进行基因编辑研究。

基本原理

CRISPR-Cas9是一种细菌天然免疫系统，用于针对外源DNA进行有针对性的降解。它的工作机制是通过CRISPRRNA(crRNA)和转录激活crRNA(trans-activatingcrRNA，tracrRNA)之间的互补配对形成复合物，能够特异性识别基因组中与其互补的序列。这种复合物可以引导Cas9内切酶切割目标DNA片段，导致DNA双链断裂的形成。这一过程实现了对目标基因组的精确编辑和修饰。如下图所示：

通过基因工程手段对crRNA和tracrRNA进行改造，将其连接在一起得到sgRNA(singleguideRNA)。通过将表达sgRNA的原件与表达Cas9的原件相连接，得到可以同时表达两者的质粒，将其转染细胞，便能够对目的基因进行基因操作，在PAM(5’-NGG)上游~3bp进行切割，如下图所示：

因此本实验的关键步骤是设计一对20bp（不包括NGG在内的）完全互补的oligo插入到如上图所示的filler。另U6启动子需要5’端的G起始转录，因此若设计的oligo第一个碱基非G，需额外增加一个G。

详细操作流程

1.设计sgRNA

分析中，显示你所键入的基因序列里有36对可选的guide序列。

分析结束，点击Downloadasgenbank查看结果，此时也会收到邮件。

选择分数较高的Guide序列，以Guide#1序列为例，2条单链oligo的序列如下：oligo1：5’-caccGCGTTCAAGTACCAGTTCGTG-3’;oligo2：5’-aaacCACGAACTGGTACTTGAACGc。标粗部分与经BsmBI酶切后的载体互补配对。BsmBI又名BbsI。

※oligoDNA序列的第一个碱基必须是G，如选取的Guide序列的第一个碱基不是G，需自行添加一个额外的G。

2.Oligo退火形成duplex

PCR仪95℃5min，缓慢降温至室温1h，1：200稀释duplex。

3.质粒酶切

4.胶回收大片段约11kb回收；小片段约2kb为切下来的filler，不要。

5.连接

室温连接4-6h。

6.转化（Amp+），挑克隆，摇菌，抽提质粒，测序！

7.转染

24孔板，细胞不要过满，同实验室日常转染操作，可选择性设置三个平行。同时转染空载作为阴性对照。每孔500ng。

8.puromycin筛选

转染稳定48-72h后加puromycin进行筛选，1~3g/mL，直至不再有细胞数量稳定，不再有细胞因不耐药死去。

9.单细胞分离

10.获得单克隆细胞株

当肉眼可见类似于菌落的细胞团时，将其从大盘或96孔板消化下来转移至12或24孔板中继续扩大培养。注意不要污染到其它细胞团，不要选取过密的细胞团。

11.扩大培养，提取细胞全基因组DNA和细胞总蛋白

12.测序

Guide序列上游100bp左右和下游200bp左右为上下游设计一对引物，以全基因组为模板，以上述引物进行PCR。PCR产物送测序，或将产物用T7E1进行酶切消化检测突变。

13.Western

与阴性对照相比，靶基因应完全敲除

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